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游离脂肪酸含量测试盒 试剂盒

价格 600.00/盒 550.00/盒
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基本参数

品牌 优选生物/Sinobestbio 产地 上海
产品等级 优级品 产品用途 检查试剂
用途 生化检测 产品规格 50管/24样100管/48样

游离脂肪酸(FFA)含量测定试剂盒说明书

微量法

测定意义:

FFA 既是脂肪水解的产物,又是脂肪合成的底物。血清中 FFA 的浓度与脂类代谢、糖代谢、

内分泌功能有关。

测定原理:

FFA 与铜离子结合形成脂肪酸铜盐,并溶于氯仿;利用铜试剂法测定铜离子含量,即可推算出游离脂肪酸含量。

自备仪器和用品:

研钵、冰、台式离心机、可调式移液枪、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板、一个 25 mL 玻璃瓶、两个 10 mL 玻璃瓶、正庚烷、无水甲醇、氯仿(三氯甲烷)、无水乙醇和蒸馏水。

试剂组成和配制:

试剂一:液体×1 瓶,室温保存。

试剂二:自备。实验前1 d,加入9.6 mL正庚烷,0.4 mL无水甲醇,10 mL氯仿(自备),盖紧后混匀,室温保存。

试剂三:液体×1 瓶,室温保存。

试剂四:粉剂×1 瓶,4℃保存。临用前在试剂瓶中加入4 mL无水乙醇,充分溶解。

标准品:粉剂×1 瓶,室温保存。临用前加入7.8 mL 氯仿充分溶解,即为500μmol/L 的棕榈酸标准溶液。

样品中 FFA提取:

1、血液中 FFA 测定:将所取血液,室温静置 1 h 后,于 4 ℃ 离心机 3 500 rpm 离心 15min,

取上层血清置于-20℃冰箱保存,待测。

2、组织中 FFA 含量测定:组织用生理盐水冲洗干净后,用吸水纸吸取表面水分,按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,入 1mL 试剂一)进行冰浴匀浆,8000rpm,4℃离心 10min,取上清液,待测。

3、细菌、真菌:按照细胞数量(104个):提取液体(mL)为500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 试剂一)冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 2 秒,间隔 3秒,总时间 3min);然后 8000rpm,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

测定:

1. 分光光度计预热 30 min 以上,调节波长到 550 nm,蒸馏水调零。

2. 空白管:取0.5mL EP管,加入 2μL 蒸馏水,100μL 试剂二,40μL 试剂三,

盖紧后充分震荡混匀(2min)静置5 min取上层清液50μL0.5mLEP管,加入100μL 试剂二40μL 试剂四,混匀后倒入微量石英比色皿/96 孔板,静置 15min,于 550nm 光吸收,记为 A 空白管。

3. 标准管:取 0.5mL EP管,加入 2μL 标准液,100μL 试剂二,40μL 试剂三,

盖紧后充分震荡混匀(2min)静置5 min取上层清液50μL0.5mLEP管,加入100μL 试剂二40μL 试剂四,混匀后倒入微量石英比色皿/96 孔板,静置 15min,于 550nm 光吸收,记为 A 标准管。

4. 测定管:取 0.5mL EP 管,加入2μL上清液,100μL 试剂二,40μL 试剂三,

盖紧后充分震荡混匀(2min)静置5 min取上层清液50μL0.5mLEP管,加入100μL 试剂二40μL 试剂四,混匀后倒入微量石英比色皿/96 孔板,静置 15min,于 550nm 光吸收,记为 A 测定管。

FFA 含量计算:

a. 使用微量石英比色皿测定的计算公式如下

1. 血液中 FFA 含量计算

FFA(μ mol/L)=[C 标准液×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)]×1 L

=500×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)

C 标准液:500μmol/L;1 L:指每升样品。

2. 组织中 FFA 含量计算

1)按样本蛋白浓度计算

FFA(μ mol/mg prot)=[C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A 标准管-A 空白管)] ÷Cpr

=0.5×(A测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷Cpr

2)按样本质量计算

FFA(μ mol/g mass)=[C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)]×V样总÷W

=0.5×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷W

3. 按细胞数量计算

FFA(μ mol/104cell)=[C标准液×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)]×V 样总÷细胞数量=0.5×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷细胞数量

C 标准液:500μmol/L;1 L:指每升样品;V 样总:上清液总体积,1 mL=0.001L;Cpr:样

本蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量,g。

b. 使用 96 孔板测定的计算公式如下

1. 血液中 FFA 含量计算

FFA(μ mol/L)=[C 标准液×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)]×1 L

=500×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)

C 标准液:500μmol/L;1 L:指每升样品。

2. 组织中 FFA 含量计算

1)按样本蛋白浓度计算

FFA(μ mol/mg prot)=[C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A 空白管)]÷Cpr

=0.5×(A测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷Cpr

2)按样本质量计算

FFA(μ mol/g mass)=[C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)]×V样总÷W

=0.5×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷W

3. 按细胞数量计算

FFA(μ mol/104cell)=[C 标准液×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管)]×V 样总÷细胞数量=0.5×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管-A 空白管) ÷细胞数量

C 标准液:500μmol/L;1 L:指每升样品;V 样总:上清液总体积,1 mL=0.001L;Cpr:样

本蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量,g。

注意事项:

1. 试剂四配制应尽量晚配,在操作到加入试剂三时,再配制试剂四。

2. 该试剂盒不可用塑料比色皿和 96 孔板测定,需用玻璃比色皿。

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