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细胞壁不溶性化酶(cell-wall binding acid invertase, B-AI)
试剂盒说明书
可见分光光度法
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
蔗糖转化酶(Invertase,Ivr)催化蔗糖不可逆地分解为果糖和葡萄糖,是高等植物蔗糖代谢关键酶之一。根据最适 pH,Ivr 分为酸性转化酶(AI)和中性转化酶(NI)两种类型。AI的最适pH为3~5。AI 分为可溶性 AI(S-AI)和细胞壁不溶性 AI(B-AI)两种类型。B-AI存在于细胞间隙并结合在细胞壁上,主要参与韧皮部质外体卸载时蔗糖的分解,以维持库源之间蔗糖的浓度。
测定原理:
B-AI催化蔗糖降解产生还原糖,进一步与3,5-二硝基水杨酸反应,生成棕红色氨基化合物,在510nm有特征光吸收,在一定范围内510nm光吸收增加速率与B-AI活性成正比。
自备用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制:
提取液 1:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;
提取液 2:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:粉剂×1 瓶,4℃保存;临用前加入25mL试剂一充分溶解备用;用不完的试剂 4℃
保存;
试剂三:液体 30mL×1 瓶,4℃保存;
粗酶液提取:
按照组织质量(g):提取液 1 体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL提取液 1),进行冰浴匀浆。12000g 4℃离心 10min,弃上清,沉淀中加入 1mL 蒸馏水,充分震荡混匀,12000g 4℃离心 10min,弃上清,沉淀中加入 1mL 提取液 2 充分混匀,4℃浸提过夜,12000g 4℃离心 20min,取上清置冰上待测。
测定步骤和加样表:
试剂名称(μL) |
测定管 |
对照管 |
样本 |
200 |
200 |
试剂一 |
800 |
|
试剂二 |
800 |
|
混匀, 37℃准确水浴 30min 后,95℃水浴 10min(盖紧,以防水分散失),流水冷却后充分 混匀(以保证浓度不变) |
||
试剂三 |
500 |
500 |
混匀,95℃水浴 10min(盖紧,以防止水分散失),流水冷却后充分混匀,510nm处,蒸馏水调零,记录各管吸光值 A,如果吸光值大于 2,可以用蒸馏水稀释后测定(计算公式中乘以相应稀释倍数),ΔA=A 测定-A 对照。
B-AI 活性计算:
标准条件下测定的回归方程为y=0.0016x-0.001;x为标准品浓度(μg/mL),y为吸光值。
(1)按蛋白浓度计算:
单位的定义:37℃每 mg 蛋白每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。
B-AI 活性(μg/min/mg prot)=[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T
=20.8×(ΔA +0.001)÷Cpr
(2)按鲜重计算:
单位的定义:37℃每 g 组织每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。
B-AI 活性(μg/min/g 鲜重)=[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(W ×V1÷V2) ÷T
=20.8×(ΔA +0.001)÷W
V1:加入反应体系中样本体积,0.2mL;V2:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,30min;
Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g。
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