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山梨醇脱氢酶(sorbitol dehydrogenase,SDH)试剂盒说明书
紫外分光光度法
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
SDH(EC 1.1.1.14)催化山梨醇脱氢生成果糖,是调控生物体内山梨醇含量的关健酶之一。
测定原理:
SDH催化山梨醇脱氢生成果糖,同时还原NAD+生成NADH,测定340nm吸光度增加速率可以计算SDH活性。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制:
提取液:液体 60mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 20mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前每瓶加入15mL蒸馏水,用不完的试剂仍4℃保存。
试剂三:粉剂×1瓶,-20℃保存;临用前每瓶加入15mL蒸馏水,用不完的试剂仍-20℃保存。
粗酶液提取:
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,
加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
3、血清(浆)样品:直接检测。
测定步骤:
1、分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。
2、样本测定
试剂名称(μL) |
测定管 |
试剂一 |
400 |
试剂二 |
300 |
试剂三 |
300 |
混匀,37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)准确水浴 5min |
|
样本 |
50 |
将上述试剂按顺序加1 mL玻璃比色皿中,加样本的同时开始计时,记录 20 秒时的初始吸光度A1和2分20秒时的吸光度A2,计算 ΔA=A2-A1。
SDH 活性计算:
1、血清(浆)SDH 活力的计算
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH(nmol/min/mL)= [ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷V 样÷T=1688×ΔA
2、组织、细菌或细胞中 SDH 活力的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr) ÷T
=1688×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W×V 样÷V 样总) ÷T
=1688×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH(nmol/min/104cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T
=3.376×ΔA
V 反总:反应体系总体积,1.05×10 -3 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.05 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,2 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
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