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还原型谷胱甘肽(reduced glutathione, GSH)试剂盒说明书
微量法
注意:正式测定之前选择 2-3个预期差异大的样本做预测定。
测定意义:
GSH是细胞内最主要的抗氧化巯基物质,在抗氧化、蛋白质巯基保护和氨基酸跨膜运输等中具有重要作用。还原型与氧化型比值(GSH/GSSG)是细胞氧化还原状态的主要动态指标。因此,测定细胞内GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值,能够很好地反映细胞所处的氧化还原状态。
测定原理:
DTNB与GSH反应生成复合物,在412nm处有特征吸收峰;其吸光度与GSH含量成正比。
自备仪器和用品:
低温离心机、水浴锅、可调节移液器、可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板、和蒸馏水。
试剂组成和配制:
试剂一:液体×1 瓶,4℃保存。
试剂二:液体×1 瓶,4℃保存。
试剂三:液体×1 瓶,4℃避光保存。
粗酶液提取:
1. 组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心 10min,取上清置冰上待测。
2. 细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
3. 血清等液体:直接测定。
GSH 测定操作:
1. 分光光度计/酶标仪预热30min,调节波长到412nm,蒸馏水调零。
2. 试剂二置于25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)水浴中保温30min。
3. 空白管:取微量玻璃比色皿或96孔板,依次加入20μL蒸馏水,140μL试剂二,40μL试剂三,混匀静置2min 后测定412nm吸光度A1。
4. 测定管:取微量玻璃比色皿或96孔板,依次加入20μL上清液,140μL试剂二,40μL试剂三,混匀静置2min后测定412nm吸光度A2。
注意:空白管只需要测定一次。
GSH 含量计算公式:
GSH 标准曲线公式:y=1.5x(x为GSH浓度,μmol /mL;y为吸光值)
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下
(1)按蛋白浓度计算
GSH(μmol/mg prot)=(A2-A1) ÷1.5×V 反总÷V 样÷Cpr =6.67×(A2-A1) ÷Cpr
(2)按样本质量计算
GSH(μmol/g)=(A2-A1) ÷1.5×V 反总÷(V 样÷V 样总×W)=6.67×(A2-A1) ÷W
(3)按细胞数量计算
GSH(μmol/104cell)=(A2-A1) ÷1.5×V 反总÷(V 样÷V 样总×细胞数量)
=6.67×(A2-A1) ÷细胞数量
(4)按液体体积计算
GSH(μmol/mL)=(A2-A1) ÷1.5×V 反总÷V 样 =6.67×(A2-A1)
V 反总:反应总体积,0.2mL;V 样总:上清液总体积,1 mL;V 样:加入反应体系中上清
液体积,20μL=0.02 mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量
b.使用96孔板测定的计算公式如下
GSH 标准曲线公式:y=0.75x(x 为GSH浓度,μmol/mL;y为吸光值)
(1)按蛋白浓度计算
GSH(μmol/ mg prot)=(A2-A1) ÷0.75×V 反总÷V 样÷Cpr =13.34×(A2-A1) ÷Cpr
(2)按样本质量计算
GSH(μmol/g)=(A2-A1) ÷0.75×V 反总÷(V 样÷V 样总×W)=13.34×(A2-A1) ÷W
(3)按细胞数量计算
GSH(μmol /104cell)=(A2-A1) ÷0.75×V 反总÷(V 样÷V 样总×细胞数量)
=13.34×(A2-A1) ÷细胞数量
(4)按液体体积计算
GSH(μmol/ mL)=(A2-A1) ÷0.75×V 反总÷V 样 =6.67×(A2-A1)
V 反总:反应总体积,0.2mL;V 样总:上清液总体积,1mL;V 样:加入反应体系中上清
液体积,20μL=0.02 mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量
注意事项:
1. 试剂一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。
2. 最低检出限为1mmol/L。
上海优选生物科技有限公司
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